鬼笔环肽（Phalloidin）是一种来源于毒蕈类鬼笔鹅膏（Amanita phalloides）的环状七肽毒素，以高亲和力（Kd= 20 nM）选择性结合于丝状肌动蛋白F-actin，而不会与单体肌动蛋白G-actin结合，通常用来标记组织切片，细胞培养物或无细胞体系中的F-actin，从而对F-actin进行定性和定量分析。另外，鬼笔环肽衍生物也以相近的亲和力结合于大小纤维，无论是动植物来源的肌肉细胞或非肌肉细胞，按照每一个肌动蛋白亚基约与一个鬼笔环肽分子的计量比结合。且非特异性结合几乎可忽略，染色区域和非染色区域辨识度非常明显。因此，鬼笔环肽衍生物特别适合替代肌动蛋白（Actin）抗体进行相关研究。另外鬼笔环肽衍生物很小，直径约12-15Å，分子量＜2000 Daltons，未标记肌动蛋白（Actin）的许多生理特性都得以维持，比如，同肌动蛋白结合蛋白如肌球蛋白，原肌球蛋白，DNase I等仍能发生反应；鬼笔环肽标记的纤维丝仍可穿透固相肌球蛋白基质；以及甘油抽提的肌纤维标记后仍可收缩等。

鬼笔环肽（Phalloidin）的结合阻止丝状肌动蛋白（微丝）的解离，稳定微丝结构，从而破坏微丝的聚合-去聚合的动态平衡。此特性使得肌动蛋白聚合发生的临界浓度（CC）降至＜1µg/mL，因此，可用作一种聚合促进剂。此外，鬼笔环肽还可抑制F-actin的ATP水解活性。

本品为SuperFluor488标记的鬼笔环肽，染色反应特异性强，对比性高，具有比Actin抗体更好的染色效果，适合用作F-actin的定性和定量检测。另外，经本品结合后的F-actin仍能维持actin自身具有的许多生物学特性。且本品的结合没有物种差异性，适用性广泛。本产品是冻干粉形式。

操作步骤

1．染色液的配置

1) 母液的配置：使用前将本品回温至室温并简短离心，加入30uL DMSO使其充分溶解，混匀即可获得1000×SuperFluor488标记鬼笔环肽母液。根据实验情况，对其分装并于-20℃避光干燥保存。

2) 工作液的配置：吸取1 µL以上SuperFluor488标记鬼笔环肽母液至1 mL PBS（含1%BSA）缓冲液中即可得到1×工作液。

【注】：不同的细胞染色情况不同，相应SuperFluor488鬼笔环肽使用量也需根据不同情况而定。

2. 染色步骤

1）细胞爬片生长>24h，使其密度达到50~60%汇合度。

2）吸掉培养液，37℃预热的1×PBS（pH 7.4）清洗细胞2次。

3）使用溶于PBS的4%甲醛溶液进行细胞固定，室温固定10~30min。

注意：避免固定剂中含有甲醇成分，因为甲醇在固定过程中可能破坏肌动蛋白。

4）室温条件下，用PBS清洗细胞2~3次，每次10min。

5）室温条件下，用丙酮（≤-20℃）脱水或者用0.5% Triton X-100溶液透化处理5min。

6）室温条件下，用PBS清洗细胞2~3次，每次10min。

7）取100µL/孔（96孔板）配制好的 SuperFluor488标记鬼笔环肽工作液，覆盖住盖玻片上的细胞，室温避光孵育30min（通常情况下，4℃~37℃孵育皆可）。

注意：为了降低背景，可于SuperFluor488标记的鬼笔环肽工作液内加入1% BSA；另外，孵育过程中为了避免溶液挥发，可将盖玻片转移到一个密封的容器内。

8）用PBS清洗盖玻片3次，每次5min。

9）使用100 µL/孔（96孔板）即用型DAPI溶液（浓度：100 nM）对细胞核进行复染，约30s。

10）用PBS清洗盖玻片，然后倒置在已经滴有一滴Fluoromount-GTM 水溶性封片剂的载玻片上。使用纸巾轻轻檫掉多余封片剂，然后用指甲油永久封片。此法制备的标本玻片可置于4℃避光保存，通常6个月内可继续做F-actin染色分析。

11）荧光显微镜或者共聚焦显微镜下进行荧光观察，选择FITC激发/发射滤片（Ex/Em=496/516nm）和DAPI激发/发射滤片（Ex/Em=364/454nm）。 

需要自备材料

1）甲醇

2）1×PBS缓冲液, pH 7.4, 细胞培养级别 

3）固定液4%多聚甲醛（溶于PBS缓冲液） 

4）丙酮或透化液0.5% Triton X-100（溶于PBS缓冲液）

5）Fluoromount-GTM 水溶性封片剂（不含DAPI） ，DAPI 

6）DAPI Fluoromount-GTM 水溶性封片剂（含DAPI）

7）BSA，标准级别 

8）载玻片和盖玻片

9）盖玻片周围密封液（如透明指甲油）

10）组装有FITC激发/发射滤片，以及DAPI激发/发射滤片的荧光显微镜或共聚焦显微镜。